Revista Biodiversidad Amazónica
Vol. 1 Núm. 2: e215 (2022)
https://doi.org/10.55873/rba.v1i2.215
e-ISSN: 2810-8752
Universidad Nacional Amazónica de Madre de Dios
Artículo original / Original article
Cómo citar / Citation: Pérez-Guevara, E. & Motta-Machicado, L. A. (2022). Actividad antibacteriana del extracto de la
corteza de la Spondias mombin L. (ubos) frente a Staphylococcus epidermidis. Revista Biodiversidad Amazónica, 1(2), e215.
https://doi.org/10.55873/rba.v1i2.215
Actividad antibacteriana del extracto de la corteza de la Spondias
mombin L. (ubos) frente a Staphylococcus epidermidis
Antibacterial activity of the bark extract of Spondias mombin L. (ubos)
against Staphylococcus epidermidis
Edith Pérez-Guevara 1* ; Luzbenia Analí Motta-Machicado 2
1 Universidad Alas Peruanas, Puerto Maldonado,
Perú
2 Universidad Nacional Amazónica de Madre de
Dios, Puerto Maldonado, Perú
Recibido: 02/04/2022
Aceptado: 21/06/2022
Publicado: 25/07/2022
*Autor de correspondencia: edithperez22@gmail.com
Resumen: El presente estudio evaluó la actividad antibacteriana del extracto etanólico de la
corteza de Spondias mombin L. (Ubos) frente a Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, la
preparación del extracto se realizó por el método de maceración con etanol al 70%; la
identificación de sus metabolitos secundarios se determinó a través de pruebas de coloración y
precipitación y la evaluación de la actividad antibacteriana, por el método de difusión en agar
con discos. Los resultados indicaron que el extracto contiene compuestos fenólicos y flavonoides;
a concentraciones de 5% , 15% , 30% y gentamicina 10ug aplicado a la bacteria, formó halos de
12,06 mm, 13,56 mm, 17,79 mm y 21,5 mm, respectivamente, tales resultados nos llevan a concluir
que el extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos) presenta actividad
antibacteriana frente a Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, y esta capacidad se debe a la
presencia de los metabolitos secundarios encontrados.
Palabras clave: bacteria de la piel; compuestos fenólicos; gentamicina
Abstract: The present study evaluated the antibacterial activity of the ethanolic extract of the bark
of Spondias mombin L. (Ubos) against Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, the preparation of
the extract was carried out by the maceration method with 70% ethanol; the identification of its
secondary metabolites was determined through staining and precipitation tests and the
evaluation of the antibacterial activity, by the diffusion method in agar with disks. The results
indicated that the extract contains phenolic compounds and flavonoids; at concentrations of 5%,
15%, 30% and 10ug gentamicin applied to the bacteria, it formed halos of 12.06 mm, 13.56 mm,
17.79 mm and 21. 5 mm, respectively, such results lead us to conclude that the ethanolic extract
of the bark of Spondias mombin L. (Ubos) presents antibacterial activity against Staphylococcus
epidermidis ATCC 14990, and this capacity is due to the presence of the secondary metabolites
found.
Keywords: skin bacteria; phenolic compounds; gentamicin
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1. Introducción
El género Staphylococcus, es uno de los cuales agrupa a los principales microorganismos causantes
de infecciones supurativas de la piel, pero también pueden producir invasión con daños severos
en cualquier otra parte del cuerpo. En los años 60, el Staphylococcus aureus fue señalado como
principal causante de infecciones nosocomiales en el mundo, pero años después su prevalencia
disminuyó; y en la actualidad, tanto esta especie bacteriana como Staphylococcus epidermidis,
están comprendidos dentro de los patógenos emergentes responsables de sepsis hospitalarias y
su incidencia es mayor en las relaciones con dispositivos intravasculares, heridas y en pacientes
inmunodeprimidos (Zamora Paucar et al., 2022). Problemática que se agrava, debido a que se ha
visto que cepas de estafilococos, poseen patrones de resistencia que abarcan a varios antibióticos,
por lo cual son considerados como agentes causales de infecciones de importancia
epidemiológica y constituyen un grave problema de salud pública (Nodarse Hernández, 2001).
La Organización Mundial de la Salud (OMS) en su asamblea del 2015, ha consensuado la
necesidad de un plan de acción global para combatir la resistencia a antimicrobianos, que
involucre a países del todo el mundo y apunta a concientizar sobre este fenómeno, optimizar el
uso de los antimicrobianos, reducir la incidencia de las infecciones hospitalarias y la diseminación
de los microorganismos resistentes, así como asegurar una sostenible inversión para la lucha
contra la resistencia antimicrobiana, si bien es una difícil batalla, si unimos esfuerzos es posible
vencerla (WHO, 2015). Asimismo, la OMS ha estimado que aproximadamente el 80% de la
población mundial, especialmente las poblaciones rurales de los países en desarrollo, recurren a
las especies vegetales medicinales, para tratar diferentes afecciones o infecciones que padecen, si
bien son tratamientos empíricos y generalmente se desconoce su mecanismo de acción, en
muchos casos se han obtenido buenos resultados (Nakayama et al., 2022), por lo que la ciencia
médica ha puesto sus ojos sobre estos recursos, en la búsqueda de nuevos fármacos.
El Perú al encontrarse situado dentro de las áreas geográficas consideradas centros de la
biodiversidad mundial; y su inmenso bosque tropical amazónico es poseedor de una gran
variedad de recursos naturales, que en su mayoría, se le atribuye propiedades medicinales, por
lo cual son empleadas empíricamente; lo que convierte a este territorio en el lugar propicio para
la exploración e investigación de sus especies vegetales; ya que desconocemos en la mayoría
de ellas su inmenso potencial como materia prima para nuevos productos con propiedades
farmacológicas (OPS, 2019), como es el caso de Spondias mombin L, a quien se le atribuye un sin
número de usos medicinales populares, como por ejemplo, las hojas son empleadas en el
tratamiento de diarreas, disentería, en la elaboración de cataplasmas atenuantes de
inflamaciones; la goma se emplea como expectorante y antiparasitario, también la literatura
científica registra su utilidad como antiescorbútico y antimicrobiano (Ayoka et al., 2010). Por lo
expuesto, el presente trabajo de investigación tiene como propósito determinar la actividad
antibacteriana del extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos) frente a
Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, microorganismo causante de múltiples infecciones;
como base para generar bases sólidas para futuras investigaciones, dirigidas a la búsqueda y
elaboración de nuevos fármacos antibacterianos.
2. Materiales y métodos
2.1. Métodos:
Para el desarrollo del presente estudio, fueron necesarios los siguientes procedimientos:
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2.1.1. Recolección de la muestra vegetal
Se recolectaron aproximadamente 7 kg de la muestra vegetal, en la localidad de Planchón, distrito
de Las Piedras, provincia de Tambopata, departamento de Madre de Dios. Se seleccionaron las
cortezas verdes no deterioradas, libres de plagas e insectos; las cuales fueron limpiadas para
eliminar cualquier impureza, y guardadas bajo condiciones óptimas para su transporte al
laboratorio.
2.1.2. Certificación taxonómica
La certificación fue realizada por el Especialista en ID Taxonómica de Flora Silvestre, el Dr. Hugo
Dueñas Linares, identificado con RD. N° 054-2017-SERFOR/DGGGSPFFS-DGSPF y Cod.
Licencia N° LC-EC-2017-009.
2.1.3. Preparación de la muestra
Se realizó en las instalaciones del Laboratorio de MC. QUIMICALAB, bajo la supervisión del Ing.
Cumpla Gutiérrez Gury Manuel; las cortezas seleccionadas fueron lavadas con abundante agua
y secadas a la sombra durante un periodo de aproximadamente 10 días, luego fueron
pulverizadas.
2.1.4. Preparación del extracto
El polvo obtenido en la etapa anterior, fue macerado en etanol al 70% por un periodo de 14 días
en agitación constante. El producto obtenido fue filtrado y concentrado en un sistema de
evaporación al vacío a una temperatura de 60ºC, con presión de 351mmHg. El producto final
obtenido fue almacenado en un frasco de vidrio color ámbar y almacenado a 10ºC, hasta el
momento de realizar los ensayos.
A partir del extracto seco, se preparó las concentraciones de 30%, 15% y 5%, las que fueron
empleadas para evaluar su actividad antibacteriana.
2.1.5. Tamizaje fitoquímico
Se realizó en las instalaciones del Laboratorio MC QUIMICALAB. La identificación preliminar
de compuestos químicos o principios activos presentes en el extracto etanólico de la corteza de
Spondias mombin L. (Ubos), necesitó una serie de ensayos, basados en pruebas de coloración y
precipitación, tales como:
2.1.5.1. Identificación de taninos
Reacción de la gelatina
Para la identificación de taninos se aplicó la reacción de la gelatina, usada por Beltran Villanueva
et al. (2013), para lo cual, se llevó a secado 3 ml de la muestra calentando en baño María, el residuo
seco se disolvió en 1 ml de agua destilada y se le agrega 10 gotas una solución acuosa de gelatina
al 2% (preparada con agua tibia) si no precipita agregar unas gotas de solución acida de cloruro
de sodio. La aparición de una turbidez hasta precipitado indica la presencia de este compuesto
químico.
2.1.5.2. Identificación de taninos
Reacción de Cloruro Férrico
Para la identificación de compuestos fenólicos se aplicó el método de cloruro férrico usado por
Beltran Villanueva et al. (2013), para lo cual, se llevó a secado 3 ml de la muestra, calentando a
baño María, el residuo seco se disolvió con agua destilada y se agregó 5 gotas de cloruro férrico
al 1% acuoso. La aparición de una coloración que puede variar de acuerdo a la cantidad y posición
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de los oxidrilos fenólicos presentes; indica: Amarilla, presencia de 1-OH; verde grisáceo, 2-OH
adyacentes y azul negro, 3-OH adyacentes.
2.1.5.3. Identificación de flavonoides
Reacción de Shinoda
Para la identificación de flavonoides, se aplicó la reacción de Shinoda, usada por Beltran
Villanueva et al. (2013), para lo cual, se tomó 0,5 ml de la muestra y se agregó una pizca de Mg
más 2 ml de ácido clorhídrico concentrado, más 0,2 ml de alcohol amílico y 2 ml de agua destilada.
La aparición de una tonalidad desde rosado en la fase orgánica y se presencia de este compuesto
químico.
Reacción con acetato de plomo
Se tomó 1 ml de la muestra y se agregó 2 ml de agua destilada más 2 ml de acetato de plomo al
5%. La formación de un precipitado blanco, indica la presencia de este compuesto químico.
2.1.5.4. Identificación de alcaloides
Reacción de Dragendorff
Para la identificación de alcaloides se aplicó la reacción de Dragendorff, Wagner y Mayer, usada
por Beltran Villanueva et al. (2013), para lo cual, se tomó 1 ml de la muestra y se agregó 1 ml de
agua destilada, más 3 gotas de ácido sulfúrico y 3 gotas de solución de dicromato. La aparición
de un precipitado color pardo naranja indica la presencia de este compuesto químico.
2.1.5.5. Identificación de antraquinonas
Reacción de Borntrager
Se tomó 1 ml de muestra y se agregó 1 ml de agua destilada, más 2 ml de bencina y 5 gotas de
Borntrager, luego se agitó. La aparición de una fase acuosa rojiza o amarilla indica la presencia
de este compuesto químico.
2.1.5.6. Identificación de lípidos
Reacción con Yodo
Se colocó una gota de la muestra en un papel filtro y se dejó secar. Luego se expuso a vapores de
Yodo. La presencia de una coloración de marrón a naranja, indica la presencia de este compuesto.
2.1.5.7. Identificación de saponinas:
Método de la espuma
Para la identificación de saponinas, se aplicó en método de la espuma usado por Beltran
Villanueva et al. (2013), para lo cual, Se tomó 2 ml de la muestra y se le agregó 8 ml de agua
destilada, luego se agitó vigorosamente. La presencia de una espuma producida a los 0, a los 5, a
los 10 minutos, indica el poder tensoactivo de las saponinas.
La presencia de los compuestos químicos o metabolitos se determinó de manera cualitativa a
través del sistema no paramétrico de cruces; Presencia: (+++ =abundante, ++ = moderado, +
=bajo, - = ausencia).
2.1.6. Evaluación de la actividad antimicrobiana
Se realizó en las instalaciones de los laboratorios de LAASA LAB, dedicado al análisis de agua,
alimentos y monitoreo ambiental, aplicando el método de difusión en agar según Kirby Bauer,
empleando disco de papel filtro a los cuales se les aplica las diferentes concentraciones del del
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extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos) frente a Staphylococcus epidermidis
ATCC 14990. Todo el procedimiento descrito a continuación, se realizó en condiciones estériles:
Preparación del agar Mueller Hinton
Se preparó siguiendo las especificaciones del fabricante. Luego se esterilizó en una autoclave a
121ºC (15 libras de presión) durante 15 minutos. Terminado el proceso, se dejó enfriar hasta que
llegue a una temperatura de 42°C a 45°C; luego entre 16-18 ml del agar fue vertido en cada placa
de Petri estéril, se dejó solidificar y se conservó en refrigeración a 5°C.
Reactivación de la cepa bacterianas
La cepa bacteriana (liofilizada) fue rehidratada siguiendo las especificaciones del fabricante, para
luego ser sembradas en agar Mueller Hinton e incubadas a 37°C por un periodo de 24 horas, para
el crecimiento y formación de colonias bacterianas.
Preparación del inóculo bacteriano
Utilizando un asa de kolle se tomó entre 3 a 4 colonias bacterianas y se transfirieron a un tubo de
ensayo que contenía 5 ml de agua destilada estéril y se homogenizo suavemente. Luego se llevó
a incubar por un periodo de 3 horas, aproximadamente, hasta alcanzar una turbidez de 0,5 de la
escala de Mc Farland (equivalente a 1X108 UFC/ml).
Inoculación de las Placas
Una vez alcanzada la turbidez esperada de la cepa bacteriana; un aplicador de algodón o hisopo
(estéril), fue sumergido en la suspensión, hasta que quedó totalmente embebido, luego este, se
presionó sobre la pared interior del tubo para eliminar el exceso del inóculo y se procedió a
sembrar en toda la superficie de una placa de Petri que contenía el Agar Mueller Hinton;
asegurándonos se ha realizado en toda su extensión.
Aplicación de los discos
Utilizando una pinza, los discos de papel filtro, se colocaron sobre la superficie del agar y se
presionó para asegurar un contacto firme, estos se distribuyeron con al menos 25 mm de
distancia, entre uno y otro. Por cada placa de petri, se aplicaron 05 discos y luego con ayuda de
una micropipeta se les colocó 20 ul de una concentración determinada del extracto a testear. Para
cada ensayo microbiológico se utilizaron 6 placas.
Incubación de las placas y lectura de los halos de inhibición
Después de aproximadamente entre 5 - 7 minutos, las placas fueron llevadas a incubación a 36°C
por 24 horas. Terminado este periodo, se observó la formación de halos de inhibición y se
midieron en milímetros utilizando un vernier digital. Todo el procedimiento anteriormente
descrito se realizó por duplicado.
Los tamaños de los halos fueron comparados con la escala de Duraffourd; e igualmente frente a
los discos de gentamicina 10ug (control positivo), para determinar la sensibilidad de la cepa
bacteriana (Tabla 1) y se calculó el porcentaje de inhibición del extracto en comparación al
antibiótico control.
Tabla 1. Diámetros críticos para Staphylococcus spp frente a la gentamicina
Antibiótico
Diámetro de los halos en mm
Resistente
Intermedio
Sensible
Gentamicina 10ug
≤ 12
13 - 14
≥ 15
Fuente: (Sacsaquispe Contreras & Velásquez Pomar, 2002)
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3. Resultados
3.1. Resultados del tamizaje fitoquímico
Los resultados del tamizaje fitoquímico realizado al extracto etanólico de la corteza de Spondias
mombin L. (Ubos) evidenciaron la existencia de compuestos fenólicos y flavonoides, como se
observa en la Tabla 2.
Tabla 2. Tamizaje fitoquímico del extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos)
Metabolito
Ensayo
Resultado
Taninos
Gelatina
++
Compuestos Fenólicos
Cloruro férrico
+++
Flavonoides
Shinoda
+++
Acetato de plomo
-
Alcaloides
Dragendorff
++
Antraquinonas
Borntrager
++
Saponinas
Vapores de I2
++
3.2. Resultados de la actividad antimicrobiana
Al aplicar el extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos) en tres concentraciones
de 5%. 15% y 30% a Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, se observó la formación de halos
inhibitorios de 12,06 mm, 13,56 mm y 17,79 mm, respectivamente. Demostrando que, a mayor
concentración, mayor efecto inhibitorio. Los detalles de las evaluaciones de la actividad
antimicrobiana se registran en la Tabla 3.
Tabla 3. Actividad antimicrobiana del extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L.
(Ubos) frente a Staphylococcus epidermidis ATCC 14990
Concentración del
extracto
Staphylococcus epidermidis
ATCC 14990
Promedios de los diámetros de los halos
de inhibición, por ensayo realizado
Promedio (mm)
1
2
5%
12,02
12,10
12,06
15%
13,78
13,35
13,56
30%
16,03
19,56
17,79
Asimismo, se probó la sensibilidad de Staphylococcus epidermidis ATCC 14990 a las tres
concentraciones del extracto etanólico de Spondias mombin L. (Ubos), según el diámetro de los
halos resultantes de la actividad antimicrobiana. Los resultados evidencian que a las
concentraciones de 30% Staphylococcus epidermidis ATCC 14990 resulta ser muy sensible (++),
según la escala de Duraffourd; a diferencia de las concentraciones de 15% y 5%, que solo es
sensible (+), tal como se detalla en la Tabla 4.
Tabla 4. Determinación de la sensibilidad antibacteriana de Staphylococcus epidermidis ATCC
14990
Concentración del
extracto
Promedio de
halo
de inhibición
Sensibilidad Antibacteriana
(Escala de Duraffourd)
Nula
Sensible
Muy
sensible
Sumamente
Sensible
Pérez-Guevara, E. & Motta-Machicado, L. A. 7
Rev. Biodivers. Amaz. 1(2): e215 (2022). e-ISSN: 2810-8752
5%
12,06
+
15%
13,56
+
30%
17,79
+
Leyenda:
Nula (-): diámetro inferior a 8 mm.
Sensible (+): diámetro entre 8 a 14 mm.
Muy sensible (++): diámetro entre 14 y 20 mm.
Sumamente sensible (+++): diámetro mayor a 20 mm.
De la misma manera, se muestran en la Tabla 5, los resultados del test de sensibilidad basado en
los diámetros críticos de los halos de inhibición de la gentamicina 10ug que delimitan las
categorías de sensible, intermedio y resistente frente a especies del género Staphylococcus. Se
visualiza que Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, frente al extracto etanólico de la corteza de
Spondias mombin L. (Ubos) a la concentracion de 30%, es sensible y presenta un porcentaje de
inhibicion del 82,7%, lo que indica que presenta buena actividad, a diferencia de las
concentraciones de 15% y 5%, que resultó ser intermedia, con porcentajes de 63% y 56%,
(actividad moderada), respectivamente.
Tabla 5. Sensibilidad antibacteriana de Staphylococcus epidermidis ATCC 14990 frente a las
diferentes concentraciones del extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos)
Concentración
del
extracto
Promedio
de halo
de
inhibición
Porcentaje de
inhibición
Diámetros críticos
Test de Sensibilidad Antibacteriana
(gentamicina 10ug = 21,5 mm)
Resistente
≤ 12mm
Intermedio
13 – 14mm
Sensible
≥ 15mm
5%
12,06 mm
56%
Moderadamente
activo
X
15%
13,56 mm
63%
Moderadamente
activo
X
30%
17,79 mm
82,7%
Buena actividad
X
Leyenda:
Inactivo: Menor a 40%.
Poco activo: 40% – 50%.
Moderadamente activo: 51% – 75%.
Buena actividad: Igual o mayor a 76%.
4. Discusión
En la identificación cualitativa de los metabolitos secundarios presentes en el extracto etanólico
de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos) se destacó la presencia de compuestos fenólicos y
flavonoides; resultados similares presentan los estudios de Nkaa et al. (2016), de Ahuchaogu et
al. (2017), Pérez-Portero et al. (2013) y Piña González et al. (2016); dichos metabolitos, serían los
responsables de la actividad antibacteriana, tal como lo afirman; ya que se ha reportado que estos
compuestos, disminuyen la actividad de enzimas bacteriana, afecta el crecimiento microbiano
por inhibición de la biosíntesis de ácidos nucleicos y otros procesos metabólicos. Por lo que
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Spondias mombin L. (Ubos) representa un buen agente antimicrobiano para el tratamiento de
muchas enfermedades infecciosas.
Respecto al extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos) posee efecto
antibacteriano a las concentraciones de 5%, 15% y 30% frente a Staphylococcus epidermidis ATCC
14990, manifestaron la formación de halos de inhibición de 12,06mm, 13,56mm y 17,79mm,
respectivamente, lo que indica que, esta especie vegetal presenta actividad antibacteriana; datos
que son respaldados por investigaciones de Roumy et al. (2020), Alencar Fernandes & Nunesm
Salgado (2018) y da Silva et al. (2017); quienes trabajaron con extractos alcohólicos de S. nombin
L. y S. dulcis frente a S. epidermidis reportando que presenta un efecto inhibitorio relativamente
moderado. Así mismo se ven apoyados por los estudios de Ahuchaogu et al. (2017); Pérez-Portero
et al. (2013) y Nkaa et al. (2016); quienes reportan actividad antibacteriana frente a Staphylococcus
aureus. En las investigaciones mencionadas, la actividad de los extractos fue menor a los
antibióticos control, así mismo se evidencia una relación directamente proporcional; entre el
incremento de la concentración del extracto y el porcentaje de inhibición. probablemente debido
a que, a mayor concentración, la cantidad de principios activos es más significativa.
Nuestros resultados fueron comparados con la escala de Duraffourd, la cual determina
cualitativamente el efecto inhibitorio in vitro, categorizando el grado de sensibilidad de una cepa
bacteriana, de manera similar al estudio de Rodríguez Robalino (2020), indicando que
Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, fue más sensible a la concentración 30% al mostrar halo
de promedio 17,79 mm, dato que es reforzado con los diámetros críticos cuando se confronta con
los de la gentamicina 10ug planteados por Sacsaquispe Contreras & Velásquez Pomar (2002).
Además, al calcular el porcentaje de inhibición, sugiere que el extracto etanólico de la corteza de
Spondias mombin L. (Ubos) al 30% es muy activo (82,7 %), frente al microorganismo en estudio.
Por otro lado nuestros datos, también pueden ser comparados y difiriendo con los reportados
por Arias (2000), quien trabajó con los extractos acuosos de hojas y corteza de Spondias mombin
frente a Staphylococcus epidermidis, no evidenciando actividad , aun cuando también trabajo con
Staphylococcus aureus, en donde si hubo actividad; esta discrepancia podría deberse a múltiples
factores; como el empleo de bajas concentraciones y/o volumen empleado para impregnar lo
discos; además de la variabilidad genética que existen en las especies vegetales y las especies
bacterianas entre otros factores.
5. Conclusiones
En el presente estudio se logró demostrar la presencia de compuestos fenólicos y flavonoides en
el extracto etanólico de la corteza de Spondias mombin L. (Ubos), dichos compuestos pueden ser
responsables de la capacidad antimicrobiana del extracto.
Luego de preparar tres concentraciones del extracto de Spondias mombin L. (Ubos) de 5%, 15% y
30%, se lograron ver la formación de halos inhibitorios de promedio 12,06 mm, 13,56 mm y 17,79
mm, respectivamente, demostrando que el extracto evaluado efectivamente, posee capacidad
antimicrobiana, así como también, podemos concluir que, a mayor concentración, mayor
capacidad inhibitoria frente a Staphylococcus epidermidis ATCC 14990.
Finalmente, el presente estudio logró demostrar que el extracto 1 etanólico de la corteza de la
Spondias mombin L. (Ubos), a la concentración de 30%, ejerce mejor actividad antibacteriana, como
lo indica la escala de Duraffourd y según los diámetros críticos para la gentamicina 10ug que
según el diámetro de los halos formados Staphylococcus epidermidis ATCC 14990 es sensible, con
un porcentaje de inhibición de 82,7%.
Financiamiento
Ninguno.
Pérez-Guevara, E. & Motta-Machicado, L. A. 9
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Conflicto de intereses
Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.
Contribución de autores
P-G, E: conceptualización, análisis formal, investigación, metodología, curación de datos escritura
(preparación del borrador final).
M-M, L. A: metodología, investigación, admiración del proyecto y supervisión.
Referencias bibliográficas
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