Evaluación de la sobrevivencia y fertilidad in vivo de espermatozoides del epidídimo de toros criollos post mortem
DOI:
https://doi.org/10.55873/ariva.v1i2.186Palabras clave:
espermatozoide, epidídimo, inseminación artificial, fertilidadResumen
El objetivo del presente estudio fue determinar la sobrevivencia in vitro y la fertilidad in vivo de espermatozoides recuperados de la cola del epidídimo de toros criollos post mortem. Se colectaron 18 pares de testículos de toros criollos adultos del camal Municipal El Collao-Ilave, posterior a su sacrificio. Cada par de testículos fueron transportados al laboratorio y almacenados aleatoriamente en refrigeración a 5°C durante 0(n=6), 12(n=6) y 24(n=6) h. Al final de cada periodo, los espermatozoides fueron colectados y evaluados antes de la congelación y después de la descongelación en motilidad total, motilidad progresiva, test hiposmótico e integridad de acrosoma, congelados con dilutor Tris-yema de huevo (10%)-glicerol (7%) en pajillas de 0,25 mL con 30x106 espermatozoides motiles/pajilla. La prueba de fertilidad in vivo se realizó en 13 vacas, evidenciando que las características espermáticas evaluadas se preservaron antes de la congelación, pero a la descongelación fueron afectados por efecto de la refrigeración. Producto del proceso de la congelación y los espermatozoides congelados-descongelados, tuvieron capacidad de fertilizar. Por tanto, los espermatozoides colectados son congelables y pueden aplicarse en técnicas reproductivas asistidas.
Citas
An, T. Z., Wada, S., Edashige, K., Sakurai, T., & Kasai, M. (1999). Viable Spermatozoa Can Be Recovered from Refrigerated Mice up to 7 Days after Death. Cryobiology, 38(1), 27–34. https://doi.org/10.1006/cryo.1998.2141
Awad, M. M., & Graham, J. K. (2004). A new pellet technique for cryopreserving ram and bull spermatozoa using the cold surface of cattle fat. Animal Reproduction Science, 84(1–2), 83–92. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2003.12.001
Costa, P. de M., Martins, C. F., Franco, V. de O., Rezende, L. O. F., Sereno, J. R. B., & Campos, H. da C. F. (2011). Nascimento de bezerros normais após inseminação artificial utilizando espermatozóides criopreservados obtidos de epidídimos refrigerados de bovinos após a morte. Ciência Rural, 41(5), 869–874. https://doi.org/10.1590/S0103-84782011005000045
Ehling, C., Rath, D., Struckmann, C., Frenzel, A., Schindler, L., & Niemann, H. (2006). Utilization of frozen–thawed epididymal ram semen to preserve genetic diversity in Scrapie susceptible sheep breeds. Theriogenology, 66(9), 2160–2164. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2006.07.003
Garde, J., Ortiz, N., García, A., López, A., & Gallego, L. (1998). Cryopreservation of sperm samples collected post mortem and Artificial Insemination in Iberian Deer. Arch. Zootec, 47, 351–356.
Jeyendran, R. S., Van der Ven, H. H., Perez-Pelaez, M., Crabo, B. G., & Zaneveld, L. J. D. (1984). Development of an assay to assess the functional integrity of the human sperm membrane and its relationship to other semen characteristics. Reproduction, 70(1), 219–228. https://doi.org/10.1530/jrf.0.0700219
Kaabi, M., Paz, P., Alvarez, M., Anel, E., Boixo, J. C., Rouissi, H., Herraez, P., & Anel, L. (2003). Effect of epididymis handling conditions on the quality of ram spermatozoa recovered post-mortem. Theriogenology, 60(7), 1249–1259. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(03)00139-0
Kishikawa, H., Tateno, H., & Yanagimachi, R. (1999). Fertility of mouse spermatozoa retrieved from cadavers and maintained at 4 C. Reproduction, 116(2), 217–222. https://doi.org/10.1530/jrf.0.1160217
Martins, C. F., Driessen, K., Costa, P. M., Carvalho-Neto, J. O., de Sousa, R. V., Rumpf, R., & Dode, M. N. (2009). Recovery, cryopreservation and fertilization potential of bovine spermatozoa obtained from epididymides stored at 5°C by different periods of time. Animal Reproduction Science, 116(1–2), 50–57. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2008.12.018
Ribeiro-Peres, A., Munita-Barbosa, L., Yumi-Kanazawa, M., Mello-Martins, M., & Ferreira de Souza, F. (2014). Criopreservación de espermatozoides bovinos extraídos de la cola del epidídimo utilizando los métodos convencional y automatizado. Archivos de Medicina Veterinaria, 46(1), 31–38. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2014000100005
Soler, A. J., Esteso, M. C., Fernández-Santos, M. R., & Garde, J. J. (2005). Characteristics of Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus) spermatozoa cryopreserved after storage at 5°C in the epididymis for several days. Theriogenology, 64(7), 1503–1517. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.03.013
Songsasen, N., Tong, J., & Leibo, S. P. (1998). Birth of live mice derived by in vitro fertilization with spermatozoa retrieved up to twenty-four hours after death. The Journal of Experimental Zoology, 280(2), 189–196. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-010X(19980201)280:2<189::AID-JEZ10>3.0.CO;2-H
Watson, P. . (2000). The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal Reproduction Science, 60–61, 481–492. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00099-3
White, W. E. (1933). The duration of fertility and the histological changes in the reproductive organs after ligation of the vasa efferentia in the rat. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Containing Papers of a Biological Character, 113(785), 544–550. https://doi.org/10.1098/rspb.1933.0066
Yu, I., & Leibo, S. P. (2002). Recovery of motile, membrane-intact spermatozoa from canine epididymides stored for 8 days at 4°C. Theriogenology, 57(3), 1179–1190. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00711-7
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2022 Manuel Guido Pérez-Durand, Natalio Luque-Mamani, Abel Eleazar Quispe-Quispe, Eloy Amador Condori-Chuchi, Francisco Halley Rodríguez-Huanca, Yan Pierr Manrique-Quispe, Uri Harold Perez-Guerra
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
